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色譜峰拖尾的根本原因是什么 已有4人參與
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今天看資料看到離子對色譜,離子對色譜通常有兩種作用力,一種是通常的反相保留分子間作用力,另一種是離子交換作用。那么我就納悶了,普通反相拖尾是由于硅羥基效應(yīng)的存在,類似于一種離子交換作用,但為什么離子對色譜就不存在這種現(xiàn)象呢? 求高手們指點(diǎn)迷津,謝謝 發(fā)自小木蟲IOS客戶端 |
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首先我來告訴你堿性物質(zhì)在普通c18柱的反向色譜為什么會拖尾:c18柱的填料是硅膠顆粒,像一個球,表面有很多羥基,18個c像一串珠子一樣串起來,通過與羥基反應(yīng),連在硅膠顆粒上,總的效果就像形成了一個毛絨球,但是由于位阻效應(yīng),只有約一半的硅羥基參與了反應(yīng),還有一半沒有反應(yīng),這些硅羥基的pka比較低,尤其是含金屬離子比較高的硅膠中,這些硅羥基在偏中性的條件下會解離成氧負(fù)離子,這些氧負(fù)離子會與堿性化合物的正離子有吸引作用,但是反向色譜保留90%以上是由疏水相互作用貢獻(xiàn)的,而這一點(diǎn)的離子作用拖了堿性化合物的后腿,使它拖尾。 當(dāng)然,還有封端沒有講,有時間再碼 |

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再講一下封端,早期的色譜柱是沒有封端的,分離堿性化合物的時候拖尾很嚴(yán)重,有些聰明人就發(fā)明了離子對色譜法,解決了拖尾問題,后來色譜柱生產(chǎn)商在鍵合了c18鏈之后使用分子體積比較小的三甲基氯硅烷去和剩下的硅羥基反應(yīng),減少硅羥基對堿性化合物的作用,這就叫封端,有了封端的色譜柱就不必要用離子對色譜法了。還有其他兩種封端方式,可以自己去查一下,當(dāng)然,封端也不是絕對的,也會有一些硅羥基沒有反應(yīng),不同廠家的色譜柱封端效果不同,封端良好的色譜柱檢測堿性化合物一般會得到比較對稱的峰型。 發(fā)自小木蟲IOS客戶端 |

至尊木蟲 (職業(yè)作家)
榜眼
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一般而言,離子對色譜可以看成是離子對試劑對硅膠的二次改性,這種改性能夠起到一種類似封端的作用,從而減少拖尾的產(chǎn)生。 發(fā)自小木蟲Android客戶端 |

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再講一下為什么離子對色譜法為什么不會拖尾,因?yàn)殡x子對色譜法色譜峰的保留主要是離子交換作用貢獻(xiàn)的!離子對色譜法的保留機(jī)制比較復(fù)雜,在低濃度時可能混雜了疏水作用和離子交換作用,但是不管怎樣,此時的離子交換作用的占比是比較大的,不像純反相色譜,離子交換作用只占一點(diǎn)點(diǎn)進(jìn)而表現(xiàn)為拖尾 發(fā)自小木蟲IOS客戶端 |

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我覺得你這個問題可以改一下,應(yīng)該問是不是存在一種濃度使堿性化合物拖尾?即使有,我們一般使用的離子對色譜法肯定遠(yuǎn)遠(yuǎn)超過了這個濃度,實(shí)際上離子對試劑會在固液間進(jìn)行分配的,這個跟硅羥基只存在固定相中還是不一樣的,這個問題我才疏學(xué)淺沒法回答,只有實(shí)驗(yàn)才能回答,你搞明白了請告訴我一下,我也想知道 發(fā)自小木蟲IOS客戶端 |


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三氟乙酸本身就是離子對試劑,主要用在蛋白和多肽的分析。三氟乙酸與多肽上的正電荷及極性基團(tuán)相結(jié)合以減少極性保留,并把多肽帶回到疏水的反相表面。以同樣的方式,三氟乙酸屏蔽了固定相上殘留的極性表面。三氟乙酸的行為可以理解為它滯留在反相固定相的表面,同時與多肽及柱床作用。但三氟乙酸并不是通常說的離子對試劑如SDS,它屬于Hofmeister Series陰離子,這些離子有相對較大的尺寸和比較分散的電荷,脂溶性相對較好,可以聚集在親水的流動相和親脂的固定相界面上,起到離子對試劑的作用,其強(qiáng)度順序?yàn)椋篐2PO4< HCOO- < CH3SO3< Cl- < NO3< CF3COO-< BF4< ClO4< PF6,陰離子越靠右,其對堿性化合物的保留和峰形越好。 |

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謝謝大神的詳細(xì)解答!但是我還是想再問一句,如果離子對色譜法中離子對試劑的濃度很低,造成疏水作用占大部分,離子作用占小部分,這種情況又會不會拖尾呢? 發(fā)自小木蟲IOS客戶端 |
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