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high_dwarf新蟲 (初入文壇)
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[求助]
微生物細胞色素c樣品提取方法 已有1人參與
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大佬們,近期購買了個elisa的微生物細胞色素c試劑盒 但是樣品提取方法說明書沒有給 有沒有大佬能夠提供相關(guān)樣品提取方法或者參考文獻 求求了 發(fā)自小木蟲Android客戶端 |
鐵蟲 (小有名氣)
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一、液體樣本 液體樣本處理原則:所有的液體樣本,用無菌管收集,2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉(zhuǎn)/分),如果以后碰到其他的液體樣本,也按這個方法,納入?yún)R總表。 血液經(jīng)抗凝處理后的全部血液為全血;離心除去血細胞后所得到的淡黃色液體為血漿。 如血液不經(jīng)抗凝處理,讓其自行凝固,則在抽血后的一段時間內(nèi),血液會自動在一系列凝血因子的作用下發(fā)生凝集,血液首先凝固成一個整體,再經(jīng)過一段時間或用離心機離心,血液中凝固的部分會與一些清澈淡黃色的液體分離開,這些液體稱為血清。 血清與血漿從表面上看似乎沒有什么不同,但其內(nèi)在的主要區(qū)別是血清中不含纖維蛋白原,是未經(jīng)抗凝處理過的血液凝固后得到的。 抽血做化驗中常遇到某些化驗要求用血清測定、用全血測定、用血漿測定,即是指血液標本的三種主要處理方式和要求。 Part.1 血清 用無菌管收集,室溫血液自然凝固10-20分鐘,2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉(zhuǎn)/分),仔細收集上清,保存過程中如出現(xiàn)沉淀,應(yīng)再次離心。 Part.2 血漿 應(yīng)根據(jù)標本的要求選擇EDTA、肝素鈉或檸檬酸鈉作為抗凝劑,混合10-20分鐘后,2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉(zhuǎn)/分),仔細收集上清,保存過程中如有沉淀形成,應(yīng)該再次離心。 Part.3 尿液 用無菌管收集,2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉(zhuǎn)/分)。仔細收集上清,保存過程中如有沉淀形成,應(yīng)再次離心。 Part.4 胸腹水 用無菌管收集,2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉(zhuǎn)/分),仔細收集上清,保存過程中如有沉淀形成,應(yīng)再次離心。 Part.5 腦脊液 用無菌管收集,2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉(zhuǎn)/分),仔細收集上清,保存過程中如有沉淀形成,應(yīng)再次離心。((采集大鼠腦脊液)的方法:采集腦脊液時,用濕紗布擦試大鼠頸背部皮膚,剪去背毛暴露皮膚。兩耳連線剪一橫切口((1. 5cm左右),在其中點向尾側(cè)沿皮下剪開2cm,將皮分離兩側(cè),擴大視野。緊貼大鼠頭骨依次逐層剪切各肌層,并斷端依次拉向尾側(cè)擴大視野。注意,有出血時用干紗布按壓止血,保持術(shù)口清晰。接近頸后黃韌帶時,小心地用7號注射針頭分離附蓋的肌肉,暴露寰枕膜。用lml注射器(針頭用止血鉗使針尖與針體成150度鈍角),針斜面向上,針尖端近水平刺入蛛網(wǎng)膜下腔,固定針體,緩慢抽取腦脊液,一般采集量為100-200微升。) Part.6 唾液 用無菌管收集,2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉(zhuǎn)/分),仔細收集上清,保存過程中如有沉淀形成,應(yīng)再次離心。 Part.7 細胞培養(yǎng)上清 檢測分泌性的成份時,用無菌管收集。2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉(zhuǎn)/分),仔細收集上清,保存過程中如有沉淀形成,應(yīng)再次離心。 Part.8 全血 用含有抗凝劑的無菌管收集,立即輕輕搖動,來回輕輕顛倒數(shù)次,使血液和抗凝劑混勻,以防血液凝固。 二、固體樣本 固體樣本處理原則:稱取1g的固體樣本,用9g的合適緩沖液溶解,分泌蛋白可以直接離心取上清檢測,細胞內(nèi)的蛋白,要先收集細胞,再用合適方法破碎,離心取上清測試。 Part.1 組織標本:用預(yù)冷的PBS (0.01 M.pH=7.4)沖洗組織,去除殘留血液,稱重后將組織剪碎。將剪碎的組織與對應(yīng)體積的PBS(一般按1:9的重量體積比,比如1g的組織樣品對應(yīng)9 mL的PBS,具體體積可根據(jù)實驗需要適當調(diào)整,并做好記錄。推薦在PBS中加入蛋白酶抑制劑(10mg組織+100微升PBS+10微升蛋白酶抑制劑) )加入玻璃勻漿器中,在冰 上充分研磨。為了進一步裂解組織細胞,可以對勻漿液進行超聲破碎或反復(fù)凍融。最后將勻漿液5000xg離心5-10分鐘,取上清檢測。 Part.2 細胞內(nèi)蛋白樣本:許多待測蛋白不是分泌蛋白,而是存在于細胞內(nèi)的蛋白,這個時候,要先收集細胞,洗滌干凈,再破碎細胞,離心取上清。 1、培養(yǎng)的細胞:A、動物細胞:用PH7.2-7.4的PBS稀釋細胞懸液,使細胞濃度達到100萬/ml左右。通過反復(fù)凍融(如果反復(fù)凍融,破碎效果不好,就采用超聲波破碎),以使細胞破壞并放出細胞內(nèi)成份。2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉(zhuǎn)/分),仔細收集上清,保存過程中如有沉淀形成,應(yīng)再次離心。 B、植物細胞:用PH7.2-7.4的PBS稀釋細胞懸液,使細胞濃度達到100萬/ml左右,置于冰盒上,用超聲破碎儀,設(shè)置破碎2s,冷卻30s的方式,充分破碎細胞,以使細胞破壞并放出細胞內(nèi)成份。2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉(zhuǎn)/分),仔細收集上清,保存過程中如有沉淀形成,應(yīng)再次離心。 2、組織的細胞:切割標本后,稱取1g組織,加入9g的pH7.2-7.4左右的PBS,用手工或勻漿器將標本勻漿充分。2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉(zhuǎn)/分),去除上清,再用pH7.2-7.4左右的PBS小心洗滌沉淀的細胞三遍。再用上述的細胞破碎方法破碎細胞。 標本采集后盡快進行實驗,若不能馬上進行試驗,可將標本放于-20℃保存,但應(yīng)避免反復(fù)凍融。 V我 189-5972-1209 |

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