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細胞自噬，究竟怎么 "玩"？ - MedChemExpress
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今年 8 月 24 日，國家自然科學基金委員會揭曉了 2023 年國自然評審結(jié)果，自噬相關(guān)研究的中標數(shù)量高達 518 項!（來源：ZCOOL 國自然項目查詢系統(tǒng)） 言歸正傳！自噬，一種針對細胞內(nèi)各種成分進行降解的基本過程。誰來降解？溶酶體；降解誰？細胞內(nèi)的各類大分子和亞細胞成分，例如核酸、蛋白質(zhì)、脂質(zhì)和細胞器等。 自噬可以是非選擇性的，細胞質(zhì)物質(zhì)被隔離到自噬體中進行吞噬，通常在營養(yǎng)缺乏時發(fā)生。相比之下，選擇性自噬會降解特定靶標，例如受損的細胞器：線粒體自噬、溶酶體自噬、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)自噬等等，從而在細胞質(zhì)量控制中發(fā)揮重要作用 (圖 1)[1][2]。 圖 1. 不同的自噬機制及特點[2]。 自噬是一個高度集成的過程，通過促進細胞存活或?qū)е录毎劳鰜砭S持細胞穩(wěn)態(tài)[3][4]。 ▐ 自噬介導的細胞保護作用 自噬的主要功能是通過回收必要的細胞成分來促進應(yīng)激/營養(yǎng)限制后的細胞存活。自噬由營養(yǎng)和能量應(yīng)激、缺氧、氧化還原應(yīng)激和線粒體損傷等多種刺激誘導[4]。 圖 2. 氧化應(yīng)激通過多種機制誘導自噬[5]。 (A-D): 響應(yīng)饑餓調(diào)節(jié)自噬的主要信號轉(zhuǎn)導途徑概述。(E-H)：誘導自噬的特定應(yīng)激途徑概述：缺氧 (E)；氧化損傷增加 (F); p53系統(tǒng)的干擾 (G)或線粒體功能障礙 (H) 誘導自噬的機制示意圖。 例如，當細胞在同時缺乏營養(yǎng)和生長因子的情況下培養(yǎng)時，自噬到達最高水平[6]。而在小鼠中，饑餓 24-48 h 后，大多數(shù)組織中的大多數(shù)細胞顯示出自噬體數(shù)量增加[7]。其次，細胞必須清除受損的線粒體，以防止 ROS 積聚[5]。當然，某些應(yīng)激途徑如中度缺氧時，也會誘導自噬，防止細胞死亡 (圖 2)[5][8]。 ▐ 自噬誘導細胞死亡 自噬經(jīng)常在細胞死亡中觀察到，在某些情況下，抑制自噬可以防止細胞死亡[9]。由于不同信號通路之間的廣泛串擾，自噬的促死亡作用非常復雜[10]。 今年 3 月，Jiao Liu 等人報道了 TMEM164 在鐵死亡期間 (而不是饑餓期間) 選擇性介導 ATG5 依賴性自噬體形成中的關(guān)鍵作用。TMEM164 通過激活自噬降解鐵蛋白 (Ferritin)、GPX4 和脂滴，以增加鐵積累和脂質(zhì)過氧化，從而促進嗜鐵細胞的死亡。TMEM164 的缺失限制了小鼠體內(nèi)鐵死亡介導的細胞毒性的抗癌活性，建立了自噬依賴性鐵死亡的新模式[11]。 圖 3. TMEM164 在自噬依賴性細胞死亡中的作用[11]。 鐵死亡激活劑 (如 RSL3) 會誘導 TMEM164 依賴性自噬體形成，導致抗鐵死亡調(diào)節(jié)因子 (如 GPX4、FTH1 和脂滴) 選擇性降解。 研究表明，GX15-070 可通過增加自噬體的積累來誘導自噬，并促進 Atg5 (自噬體膜的一個組成部分) 與壞死體 (Necrosome) 的關(guān)鍵成分，即 FADD、RIP1 和 RIP3 的相互作用，觸發(fā)壞死體在自噬體上的組裝。這導致細胞質(zhì)細胞死亡信號復合物的形成，引發(fā)壞死性細胞死亡[12]。 圖 4. GX15-070 通過促進壞死體在自噬體上的組裝來觸發(fā)壞死性凋亡[12]。 自噬在癌癥中具有的雙重作用，具體取決于癌癥的類型和階段[10][13]。 一方面，自噬可以促進腫瘤的發(fā)生和轉(zhuǎn)移，目前 FDA 批準的自噬抑制劑是 Chloroquine 和 Hydroxychloroquine[14]。另一方面，自噬可以通過自身或與其他細胞死亡途徑協(xié)同促進細胞死亡來增強癌癥治療的功效 (表 1)[10]。 表 1. 誘導自和細胞死亡的藥物治療[10]。 隨著自噬研究熱度的增加，其相關(guān)檢測也成為科研“汪”們的密切關(guān)注。細胞自噬體的數(shù)量和自噬通量常作為細胞自噬活性水平的指標。 ▐ 監(jiān)測自噬體的數(shù)量 目前使用三種主要方法來監(jiān)測自噬體的數(shù)量，包括電子顯微鏡、光學顯微鏡檢測 LC3 的亞細胞定位以及生化檢測 LC3 的膜相關(guān)形式[15]。 最傳統(tǒng)的方法是電子顯微鏡，通過觀察樣品判斷是否有自噬泡樣結(jié)構(gòu)出現(xiàn)。電鏡下，發(fā)生自噬的細胞可見損傷的細胞器如線粒體的腫脹變性，其周圍有空泡狀雙層膜樣結(jié)構(gòu)，或雙層膜環(huán)繞線粒體形成自噬體，也可見自噬溶酶體內(nèi)最終不能降解的殘體等 (圖 5 和圖 6A)[15][16]。 圖 5. 自噬體和自溶酶體形態(tài)[15]。 其次，哺乳動物自噬蛋白 LC3 是自噬體的標志物，可通過更廣泛使用的光學顯微鏡和生化方法所檢測。內(nèi)源性 LC3 或 GFP-LC3 通過熒光顯微鏡觀察為彌散的細胞質(zhì)池或主要代表自噬體的點狀結(jié)構(gòu) (圖 6 B-C)。 ▐ 監(jiān)測自噬通量 目前測量自噬通量的主要方法之一是監(jiān)測 LC3 周轉(zhuǎn)率，當用溶酶體試劑 (如氯化銨、Chloroquine 或 Bafilomycin A1) 或溶酶體蛋白酶抑制劑 (如 E64d) 處理細胞時，LC3-II 的降解被阻斷，導致 LC3-II 的積累。因此，樣品之間 LC3-II 量的差異代表了被遞送到溶酶體進行降解的 LC3 量 (圖 6D)[15]。 圖 6. 自噬體數(shù)量和自噬通量的監(jiān)測方法[15]。 其次，可以通過免疫印跡分析或流式細胞術(shù)定量或通過熒光顯微鏡定性觀察總細胞 LC3 的量，與自噬通量成反比。除了 LC3 之外，其他自噬底物的水平也可用于監(jiān)測自噬通量 (圖 6)。 本期小 M 為大家總結(jié)了細胞自噬的類型、相關(guān)機制圖及特征等相關(guān)基礎(chǔ)知識，并介紹了自噬的細胞保護與促死亡的雙重功能，最后為大家整理了有關(guān)細胞自噬的相關(guān)檢測方法！那本期就到這里啦~咱們下期再見~ MCE的所有產(chǎn)品僅用作科學研究或藥證申報，我們不為任何個人用途提供產(chǎn)品和服務(wù)。 參考文獻： [1] Vargas JNS,et al. The mechanisms and roles of selective autophagy in mammals. Nat Rev Mol Cell Biol. 2023 Mar;24(3):167-185. [2] Aman Y,et al. Autophagy in healthy aging and disease. Nat Aging. 2021 Aug;1(8):634-650. [3] Noguchi M, et al. Autophagy as a modulator of cell death machinery. Cell Death Dis. 2020 Jul 8;11(7):517. [4] Denton D, et al. Autophagy-dependent cell death. Cell Death Differ. 2019 Mar;26(4):605-616. [5] Kroemer G, et al. Autophagy and the integrated stress response. Mol Cell. 2010 Oct 22;40(2):280-93. [6] Boya P, et al. Inhibition of macroautophagy triggers apoptosis. Mol Cell Biol. 2005 Feb;25(3):1025-40. [7] Mizushima N. The role of the Atg1/ULK1 complex in autophagy regulation. Curr Opin Cell Biol. 2010 Apr;22(2):132-9. [8] Bellot G, et al. Hypoxia-induced autophagy is mediated through hypoxia-inducible factor induction of BNIP3 and BNIP3L via their BH3 domains. Mol Cell Biol. 2009 May;29(10):2570-81. [9] Jung S, et al. Autophagy as a decisive process for cell death. Exp Mol Med. 2020 Jun;52(6):921-930. [10] Denton D, et al. Autophagy as a pro-death pathway. Immunol Cell Biol. 2015 Jan;93(1):35-42. [11] Liu J, et al. TMEM164 is a new determinant of autophagy-dependent ferroptosis. Autophagy. 2023 Mar;19(3):945-956. [12] Basit F, et al. Obatoclax (GX15-070) triggers necroptosis by promoting the assembly of the necrosome on autophagosomal membranes. Cell Death Differ. 2013 Sep;20(9):1161-73. [13] Li X, et al. Autophagy and autophagy-related proteins in cancer. Mol Cancer. 2020 Jan 22;19(1):12. [14] Mohsen S, et al. Autophagy Agents in Clinical Trials for Cancer Therapy: A Brief Review. Curr Oncol. 2022 Mar 5;29(3):1695-1708. [15] Mizushima N, et al. Methods in mammalian autophagy research. Cell. 2010 Feb 5;140(3):313-26. [16] Martinet W, et al. In situ detection of starvation-induced autophagy. J Histochem Cytochem. 2006 Jan;54(1):85-96. |
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