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[求助]
求助,用CRISPR-Cas9一直敲不掉鮑曼的基因 已有2人參與
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CRISPR的實驗已經開展了兩個多月了,一直篩不出成功敲除的目標菌,快崩潰了 。參考的文章是CellPress的CRISPR-Cas9-Based Genome Editing and Cytidine Base Editing in Acinetobacter baumannii 一切按照說明書來,唯一的不同可能是我們把供體片段連接到pSGAb上了,因為擔心供體和質粒一起電轉效率不高。 在每一步質粒操作前都PCR驗證過質粒上的關鍵片段,比如cas表達基因、RecAb重組酶表達基因、gRNA和供體片段,而且也經過測序證明序列沒有問題。在幾次重復的時候也更換過IPTG、更換過藥板,也嘗試延長誘導時間,但最后還是沒有陽性菌。 篩選的時候一開始400ul電轉完的菌液只取100ul來涂雙抗板,后來無論是全部菌液涂幾塊板,挑96個,還是濃縮菌液后涂一個板然后調所有菌落(也長的不多,只有40~50個左右菌落),都沒有篩出來陽性菌。 目前比較迷惑的問題: 1.是文章里寫成果經過供體同源重組的話能產生一百多個菌落,但是我們的試驗好幾次都只有不到100個菌落,而且和兩個對照(不把供體導入和只導入個原質粒)長出來的菌落數差不多,這是說明同源重組沒有成功還是cas9沒有切斷目的位點?。 2.篩選的雙抗板上長的菌長速明顯有差異,有些菌落長得很快,養(yǎng)個過夜就有綠豆大小的菌落,有些又幾乎養(yǎng)個48小時才長出來個針尖狀的小菌落,但是檢驗過這些無論大的小的都是鮑曼,是什么原因? 3.供體片段是不是不能連在pSGAb上一起轉?是不是按照文章里面寫的用單鏈供體片段和質粒一起轉進去比較好?用不對稱PCR來獲取單鏈供體片段可行嗎? 希望有經驗的兄弟指導指導,謝謝。。 |
銀蟲 (初入文壇)
捐助貴賓 (正式寫手)
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樓主你好,我之前用過中科院楊晟老師開發(fā)的CRISPR/Cas系統做基因敲除。 關于你的第一個問題,我覺得只要板子上長出單克隆就行,不必追求單克隆的數目。因為不同的細菌種類,感受態(tài)濃度,電擊條件等等都會影響最后長出的單克隆數目。 關于你的第二個問題,可能是因為單克隆之間的差異造成的。 關于你的第三個問題,我之前試過donor片段和sgRNA質粒一起共轉,也試過將donor片段構建到sgRNA的質粒上再進行電轉。我實驗下來,感覺后面的方法效率更高,而且更加精確。 希望我的回答能夠對你有幫助。rockwzh@163.com,這是我的郵箱,之后再有問題,可以再交流。 |
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